Карантинные для Российской Федерации бактериозы видов Ralstonia

В ФГБУ «ВНИИКР» в 2018–2019 гг. подготовлены анализы фитосанитарного риска по возбудителям бактериальных болезней, входящих в видовой комплекс Ralstonia solanacearum sensu lato. Данный видовой комплекс включен в перечни Европейской и Средиземноморской организации по карантину и защите растений (ЕОКЗР) и Европейского союза (ЕС) и реклассифицирован в 2018 г. в 3 различных вида: R. solanacearum (А2), R. pseudosolanacearum (А2) и R. syzygii (А1). В процессе подготовки анализов фитосанитарного риска проведено изучение таксономического положения данных видов, сбор, обобщение и анализ данных по их географическому распространению, фитосанитарному статусу, растениям-хозяевам в странах распространения, биологическим особенностям, методам выявления и идентификации, способам распространения данных видов, а также их вредоносности, в том числе в экономическом измерении. По результатам исследований биологии рассмотренных видов, анализа условий, способствующих проникновению и акклиматизации возбудителей, а также их потенциальной вредоносности определен их фитосанитарный риск для территории Российской Федерации. Установлено, что все рассмотренные виды отвечают критериям карантинных организмов и могут распространиться на территории Российской Федерации, принося значительный ущерб поражаемым культурам.

1. Единый перечень карантинных объектов Евразийского экономического союза (ЕПКО ЕАЭС), утвержденный Решением Совета Евразийской экономической комиссии от 30 ноября 2016 г.

2. Стандарт ЕОКЗР, EPPO PM 7/21 (2) «Ralstonia solanacearum, R. pseudosolanacearum and R. syzygii (Ralstonia solanacearum species complex)». 2018. – Bulletin OEPP/EPPO Bulletin, № 48 (1): 32–63.

3. Шероколава Н., Дренова Н. Стандарт организации СТО ВНИИКР 4.009-2011 «Возбудитель бурой бактериальной гнили картофеля Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et al. Методы выявления и идентификации». 2011.

4. Шнейдер Е. Анализ фитосанитарного риска возбудителя бурой гнили картофеля Ralstonia solanacearum для территории Российской Федерации. Заключительный отчет. – М.: ФГБУ «ВНИИКР», 2018, 60 с.

5. Шнейдер Е., Дренова Н. Анализ фитосанитарного риска возбудителя Ralstonia pseudosolanacearum для территории Российской Федерации. Заключительный отчет. – М.: ФГБУ «ВНИИКР», 2019, 75 с.

6. Шнейдер Е., Дренова Н. Анализ фитосанитарного риска возбудителя Ralstonia syzygii для территории Российской Федерации. Заключительный отчет. – М.: ФГБУ «ВНИИКР», 2019а, 78 с.

7. Яковлева В. Оценка управления фитосанитарными рисками, связанными с импортированием, экспортированием и перемещением продовольственного картофеля (заключительный отчет). М., 2018.

8. Arwiyanto T., Nurcahyanti S., Indradewa D., Widada J., 2015. Grafting local commercial tomato cultivars with H-7996 and Eg-203 to suppress bacterial wilt (Ralstonia solanacearum) in Indonesia. In: Proceedings of the 4th International Symposium on Tomato Diseases. Orlando, FL: International Society for Horticultural Science (ISHS). – Acta Horticulturae, 1069: 173–178.

9. Bergsma-Vlami M., J. van de Bilt, N. Tjou-Tam-Sin, M. Westenberg, E. Meekes, H. Teunissen, and J. Van Vaerenbergh, 2018. Phylogenetic assignment of Ralstonia pseudosolanacearum (Ralstonia solanacearum Phylotype I) isolated from Rosa spp. – Plant Dis., Vol. 102, № 11.

10. Buddenhagen I., Sequeira L., Kelman A., 1962. Designation of races in Pseudomonas solanacearum. – Phytopathology, 52: 726.

11. Buddenhagen I., Kelman A., 1964. Biological and physiological aspects of bacterial wilt caused by Pseudomonas solanacearum. – Annu. Rev. Phytopathol., 2: 203-230.

12. Cahyaniati C., Mortensen N., Mathur S., 1997. Bacterial Wilt of Banana in Indonesia. Technical Bulletin Jakarta: Directorate Plant Protection of Indonesia.

13. Carstensen G., Venter S., Wingfield M., Coutin-ho T., 2017. Two Ralstonia species associated with bacterial wilt of Eucalyptus. – Plant Pathology, Vol. 66 (3): 393–403.

14. Champoiseau P., Jones J., and Allen C., 2009. Ralstonia solanacearum race 3 biovar 2 causes tropical losses and temperate anxieties.

15. Coupat B., Chaumeille-Dole F., Fall S., Prior P., Simonet P., Nesme X. et al., 2008. Natural transformation in the Ralstonia solanacearum species complex: number and size of DNA that can be transferred. – FEMS Microbiol. Ecol., 66: 14–24.

16. Davis R., Moore N., Fegan M., 2001. Blood dis-ease and Panama disease: two newly introduced and grave threats to banana production on the island of New Guinea. In: Food Security for Papua New Guinea. Proceedings of the Papua New Guinea Food and Nutri-tion 2000 Conference PNG University of Technology, Lae, 26–30 June 2000. Editors Bourke R.M., Allen M.G., Salisbury J.G. (Lae: ACIAR), 816–821.

17. Fegan M., Prior P., 2006. Diverse members of the Ralstonia solanacearum species complex cause bacterial wilts of banana. – Australas. Plant Pathol, № 35: 93–101.

18. Gäumann E., 1921. Onderzoekingen over de bloedziekte der bananen op Celebes I (Investigations into the blood disease of bananas on Celebes Island). Mededeelingen van het Instituut voor Plantenziekten, No. 50, 47 p. In: Rev. Appl. Mycol., № 1: 225–227.

19. Genin S., Denny T., 2012. Pathogenomics of the Ralstonia solanacearum species complex. – Annu. Rev. Phytopathol., № 50: 67–89.

20. Gurjar M., Sagar V., Bag T., Singh B., Shar-ma S., Jeevalatha A. et al., 2015. Genetic diversity of Ralstonia solanacearum strains causing bacterial wilt of potato in the Meghalaya state of India. – J. Plant Pathol., № 97: 135–142.

21. Hayward A., 1964. Characteristic of Pseudomo-nas solanacearum. – J. Appl. Bact., Vol. 27, № 2: 265–277.

22. Hayward A., 1991. Biology and epidemiology of bacterial wilt caused by Pseudomonas solanacearum. – Annu. Rev. Phytopathol, № 29: 65–87.

23. Hayward A., 1994. Systematics and phyloge-ny of Pseudomonas solanacearum and related bacteria. In: Hayward A.C., Hartman G.L. (Eds.) Bacterial Wilt: The Disease and its Causative Agent, Pseudomonas so-lanacearum. Wallingford, CAB International: 123–135.

24. Horita M., Suga Y., Ooshiro A., Tsuchiya K., 2010. Analysis of genetic and biological characters of Japanese potato strains of Ralstonia solanacearum. – J. Gen. Plant Pathol., № 76: 196–207.

25. Horita M., Tsuchiya K., Suga Y., Yano K., Waki T., Kurose D. et al., 2014. Current classification of Ralstonia solanacearum and genetic diversity of the strains in Japan. – J. Gen. Plant Pathol., № 80: 455–465.

26. Janse J., van den Beld H., Elphinstone J., Simpkins S., Tjou-Tam-Sin N., van Vaerenbergh J., 2004. Introduction to Europe of Ralstonia solanacearum biovar 2 race 3 in Pelargonium zonale cuttings. Journal of Plant Pathology, № 86 (2): 147–145.

27. Jeong Y., Kim J., Kang Y., Lee S., Hwang I., 2007. Genetic diversity and distribution of Korean isolates of Ralstonia solanacearum. – Plant Dis., № 91: 1277–1287.

28. Kim Y., Lim S., Kim J., Lee H., Park D., 2019. First Report of Ralstonia solanacearum Phylotype I Causing Bacterial Wilt on Rosa L. spp. in Korea. – Plant Dis-ease, Vol. 103, № 6: 1407.

29. Kogeethavani R., Sulastri N., Mazanah M., Rozeita L., Roff M., 2014. First Report of Blood Disease Bacterium on Banana in Malaysia. Selangor: Malaysian Agricultural Research and Development Institute.

30. Lemessa F., Zeller W., 2007. Screening rhizobacteria for biological control of Ralstonia solanacearum in Ethiopia. – Biological Control, № 42 (3): 336–344.

31. Lomer C., Eden-Green S., Boa E., Supriadi E., 1992. Evidence for a forest origin of Sumatra disease of cloves. – Trop. Sci., № 32: 95–98.

32. Lopes C., Rossato M., 2018. History and Status of Selected Hosts of the Ralstonia solanacearum Species Complex Causing Bacterial Wilt in Brazil. – Frontiers in Microbiology, № 9.

33. Mairawita M., Suswati S., Habazar T., Hasyim A., Nasir N., 2012. Trigona minangkabau potential as bacterial spreader agent of Ralstonia solanacearum phylotype IV cause blood disease on banana plants. In: Proceedings of the 2012 International Conference on Biological and Life Sciences. Singapore: IACSIT Press, 109–116.

34. Maulana M., Sayaka B., 2007. The features of vegetables in Indonesia and the current policy in the framework of agricultural development. – Anal. Kebijakan Pertanian, № 5: 267–284.

35. Mahbou Somo Toukam et al., 2009. Broad Diversity of Ralstonia solanacearum Strains in Cameroon. – Plant Disease, № 93 (11): 1123–1130.

36. N’Guessan C. et al., 2012. So near and yet so far: The Specific Case of Ralstonia solanacearum Populations from Cote d’Ivoire in Africa. – Phytopathology, № 102 (8): 733–740.

37. Norman D., Yuen J., 1999. First report of Ralstonia (Pseudomonas) solanacearum infecting pot an-thurium production in Florida. – Plant Dis., № 83: 300.

38. Norman D., Zapata M., Gabriel D., Duan Y., Yuen J., Mangravita-Novo A., Donahoo R., 2009. Genetic diversity and host range variation of Ralstonia solanacearum strains entering North America. – Phytopathology, № 99: 1070–1077.

39. Poussier S., Trigalet-Demery D., Vandewalle P., Goffinet B., Luisetti J., Trigalet A., 2000. Genetic diversity of Ralstonia solanacearum as assessed by PCR-RFLP of the hrp gene region, AFLP, and 16S rRNA sequence analysis and identification of an African subdivision. – Microbiology, 146: 1679–1692.

40. Prior P. Fegan M., 2005. Recent developments in the phylogeny and classification of Ralstonia solanacearum. In: Proceedings of the 1st International Symposium on Tomato Diseases (Acta Horticulturae); editors Momol M.T., Ji P., Jones J.B.. Orlando, FL: International Society for Horticultural Science, 127–136.

41. Roberts S., Eden-Green S., Jones P., Ambler D., 1990. Pseudomonas syzygii sp. nov., the cause of Sumatra disease of cloves. – Syst. Appl. Microbiol., № 13: 34–43.

42. Safni I. et al., 2014. Polyphasic taxonomic revision of the Ralstonia solanacearum species complex: proposal to emend the descriptions of Ralstonia sola-nacearum and Ralstonia syzygii and reclassify current R. syzygii strains as Ralstonia syzygii subsp. syzygii subsp. nov., R. solanacearum phylotype IV strains as Ralstonia syzygii subsp. indonesiensis subsp. nov., banana blood disease bacterium strains as Ralstonia syzygii subsp. celebesensis subsp. nov. and R. solanacearum phylotype I and III strains as Ralstonia pseudosolanacearum sp. nov. – International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, № 64: 3087–3103.

43. Sagar I. et al., 2014. Phylotype analysis of Ralstonia solanacearum strains causing potato bacterial wilt in Karnataka in India. – African journal of micro-biology research, № 8 (12): 1277–1281.

44. Salcedo S., Santiago T., Colman A., Barreto R., 2017. First report of bacterial wilt of chickpea caused by Ralstonia pseudosolanacearum in Brazil. – Plant Dis-ease, Vol. 101, № 4: 629.

45. Sikirou M., Saito K., Achigan-Dako E., Dramé K., Ahanchédé A., Venuprasad R., 2015. Genetic improvement of iron toxicity tolerance in rice – prog-ress, challenges and prospects in West Africa. – Plant Prod. Sci., № 18: 423–434.

46. Suga Y., Horita M., Umekita M., Furuya N., Tsuchiya K., 2013. Pathogenic characters of Japanese potato strains of Ralstonia solanacearum. – J. Gen. Plant Pathol., 79: 110–114.

47. Tebaldi C., Arblaster J., 2014. Pattern scaling: Its strengths and limitations, and an update on the latest model simulations. – Climatic Change, 122 (3): 459–471. https://doi.org/10.1007/s10584-013-1032-9.

48. Teng S., Aziz N., Mustafa M., Laboh R., Ismail I., Sulaiman S. et al., 2016. The occurrence of blood disease of banana in Selangor, Malaysia. – Int. J. Agric. Biol., № 18: 92–97.

49. Tjou-Tam-Sin N., van de Bilt J., Westenberg M., Gorkink-Smits P., Landman N. and Bergsma-Vlami M., 2018. Study of the virulence of Ralstonia pseudosolanacearum from greenhouse roses (Rosa spp.). – Koninklijke Nederlandse Planteziektenkundige Vereniging, Wageningen, Netherlands. Gewasbescherming, Vol. 49, № 2: 57–63.

50. Villa J., Tsuchiya K., Horita M., Natural M., Opina N., Hyakumachi M., 2005. Phylogenetic relationships of Ralstonia solanacearum species complex strains from Asia and other continents based on 16S rDNA, endoglucanase, and hrpB gene sequences. – J. Gen. Plant Pathol., № 71: 39–46.

51. Wenneker М. et al., 1999. Ralstonia (Pseudomonas) solanacearum Race 3 (Biovar 2) in Surface Water and Natural Weed Hosts: First Report on Stinging Nettle (Urtica dioica). – European Journal of Plant Pathology, № 105 (3): 307–315.

52. Wicker E., Lefeuvre P., de Cambiaire J., Lemaire C., Poussier S., and Prior P., 2012. Contrasting recombination patterns and demographic histories of the plant pathogen Ralstonia solanacearum inferred from MLSA. – ISME J., № 6: 961–974.

53. Xu et al., 2009. Quantitative proteomics reveals the function of unconventional ubiquitin chains in proteasomal degradation. – Cell, № 137 (1): 133–145.

54. Yahiaoui N., Chéron J., Jeetah R., Benimadhu S., Félicité J., Cellier G., Prior P., Guérin F. Poussier S., 2016. First report of Ralstonia pseudosolanacearum phylotype I causing bacterial wilt on Rodrigues Island, Indian Ocean. – Plant Dis., № 100: 2522.

55. Yahiaoui N., Chéron J., Ravelomanantsoa S., Hamza A., Petrousse B., Jeetah R., Jaufeerally-Fakim Y., Félicité J., Fillâtre J., Hostachy B., Guérin F., Cellier G., Prior P., Poussier S., 2017. Genetic diversity of the Ralstonia solanacearum species complex in the southwest Indi-an Ocean islands. – Front. Plant Sci., № 8: 2139.

56. CABI. – URL: https://www.cabi.org/cpc (дата обращения: 17.06.2021).

57. EPPO Global Database. – URL: https://gd.eppo.int (дата обращения: 17.06.2021).